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培養(yǎng)成纖維細胞應該使用什么培養(yǎng)基?有關單個細胞系的培養(yǎng)基的詳細信息,請參閱 目錄,在單個樣本詳細信息頁面的“培養(yǎng)協(xié)議"選項卡中。在使用之前,我們將 L- 氨酰胺(或等效物)加入到2mM 的最終濃度中。如果細胞培養(yǎng)基的長期儲存不成問題,可以使用含有氨酰胺(或等效物)的商業(yè)制備培養(yǎng)基??评餇栄芯克皇褂每股鼗蚩拐婢幬?,因為在細胞儲存庫中存在隱性感染的危險。如果需要,研究人員可以添加抗生素。如果細胞培養(yǎng)比預期的要慢,我們的第一種方法是切換到另一批預先測試的血清和/或改變血清濃度5% 。生長緩慢的其他原因包括: 微生物污染,過于頻繁的繼代培養(yǎng),繼代培養(yǎng)過低密度播種,細胞系衰老,培養(yǎng)基組成的變化,以及培養(yǎng)箱在調節(jié)溫度、濕度或 CO2方面的不足
如何處理新接收的成纖維細胞培養(yǎng)?程序: 1。觀察細胞片的匯合情況,細胞形態(tài)和污染跡象。用消毒液擦拭培養(yǎng)瓶,放在37 °C 的培養(yǎng)箱中過夜,放下細胞片。不要移除培養(yǎng)基(只含有5% 的 FBS 以減緩運輸過程中的生長)。第二天,如上所述檢查燒瓶,根據(jù)培養(yǎng)物的匯合情況,要么通過取出運輸培養(yǎng)基并用約5ml 生長培養(yǎng)基覆蓋細胞來喂養(yǎng)燒瓶,要么根據(jù)下面概述的程序繼代培養(yǎng)細胞。當繼代培養(yǎng)一個新收到的成纖維細胞培養(yǎng)物時,必須確定正確的傳代數(shù)。如果提交表或瓶子上注明了通過號,繼代培養(yǎng)的瓶子應該得到下一個連續(xù)的通過號。
成纖維細胞系是如何繼代培養(yǎng)的?供應• HBSS 中的0.53 mM EDTA • HBSS 中的0.04% 蛋白酶/0.53 mM EDTA •成纖維細胞生長培養(yǎng)基程序: 1。通過抽吸去除中間部分。2。使用試劑的適當體積見表1。3。加入適量的 EDTA 溶液到燒瓶中,不要移動電池片,將燒瓶的電池面朝下放置。
4.通過倒置顯微鏡仔細觀察細胞長達10分鐘。如果細胞開始變圓或離開燒瓶,立即取出 EDTA 溶液。5。用 EDTA/蛋白酶溶液取代 EDTA 溶液。6。將燒瓶置于攝氏37度的環(huán)境下培養(yǎng)4至7分鐘。這些細胞會聚集起來,然后從燒瓶表面分離出來。7。擰緊瓶蓋,輕輕地敲打瓶子的側面,把剩余的細胞從瓶子里取出來。8。用顯微鏡檢查燒瓶,確保細胞全部分離。如果7分鐘后細胞沒有分離,再培養(yǎng)1到2分鐘。9。用生長培養(yǎng)基(停止培養(yǎng)基)清洗燒瓶的背面,使蛋白酶失活,然后輕輕地將細胞和培養(yǎng)基混合。10。刪除一個細胞計數(shù)等分試樣,并計數(shù)細胞。11。根據(jù)表2.12給燒瓶播種。將燒瓶放置在一個保溫箱中,保溫箱設置為適合單個細胞系的參數(shù)(通常為37 °C,5% CO2) ,如果沒有通風,則松開瓶蓋。幾個小時后檢查培養(yǎng)物的細胞附著情況和 pH 值,繼代培養(yǎng)間隔的時間取決于細胞系。大多數(shù)哺乳動物細胞系需要每5-7天進行一次亞培養(yǎng)。如果培養(yǎng)時間超過5天,每3-4天更換一次培養(yǎng)基。
成纖維細胞培養(yǎng)物如何冷凍用于低溫儲存?用品• HBSS 中的0.53 mM EDTA • HBSS 中的0.04% 蛋白酶/0.53 mM EDTA •成纖維細胞生長培養(yǎng)基•成纖維細胞冷凍培養(yǎng)基(含10% 甘油或5% DMSO 的生長培養(yǎng)基)程序1。如果細胞在10% 的甘油中冷凍,完整的冷凍培養(yǎng)基可以保持在室溫下直到使用。以二甲基亞砜配制的冷凍介質應冷藏至使用為止。用顯微鏡檢查每個要冷凍(冷凍池)的燒瓶是否有污染和任何不尋常的生長模式。一個燒瓶應該作為一個“備用"燒瓶,直到可以檢查冷凍的可行性。3。對于每個燒瓶,按照上面的子培養(yǎng)步驟1-9進行。4。轉移細胞懸浮液從所有燒瓶和池細胞在離心機瓶坐在冰上。5.從冷凍池中取出一份等分試樣進行計數(shù),計算細胞數(shù)并計算出冷凍池中存活的細胞總數(shù)。6。將冷凍池以60-100克的溫度在8-10 °C 下離心10分鐘。取出上清液,用溫和的研磨冷凍培養(yǎng)基以每毫升至少5 × 105個活細胞的最終濃度重新懸浮細胞團。將1毫升細胞懸浮液分裝到玻璃安瓿或塑料冷凍瓶中。9。使用氧丙烷火焰密封玻璃安瓿。檢查每個玻璃安瓿是否有在4 °C 浸泡在甲藍/乙醇中密封時形成的針孔或玻璃氣泡。10。將安瓿或冷凍瓶以每分鐘 -1攝氏度至 -80攝氏度的速度冷凍(在微處理器控制的冰箱中或被動地置于異丙醇浴中,在 -80攝氏度的冰箱中過夜)。將冷凍細胞儲存在液氮中。將玻璃安瓿浸入液體中,在氣相中儲存塑料冷凍瓶。
如何從低溫儲存中回收成纖維細胞培養(yǎng)物?程序1。準備適當?shù)呐囵B(yǎng)基。從冷凍儲存的容器中取出一個安瓿或冷凍瓶,立即放入攝氏37度的水中,用力攪拌。3。一旦全解凍,用70% 的酒精海綿或同等消毒劑消毒安瓿或冷凍瓶。用銼刀劃破玻璃安瓿的頸部,然后用開瓶器打開。
4.使用無菌移液管移除安瓿或冷凍瓶中的內容物,并將其放入含有5毫升適當新鮮培養(yǎng)基的 T25組織培養(yǎng)瓶中。5。如果需要細胞計數(shù),用1毫升移液管輕輕地混合瓶中的物質,取出0.2毫升用1:5稀釋的細胞計數(shù)。將燒瓶放在適當?shù)呐囵B(yǎng)箱中,細胞表面朝下。輕輕旋轉燒瓶,使細胞懸浮液均勻地分布在燒瓶表面。調整蓋子以允許適當?shù)臍怏w交換(取決于介質的緩沖系統(tǒng))。成纖維細胞培養(yǎng)物應在恢復后第二天用新鮮培養(yǎng)基重新喂養(yǎng)。如果通過清洗和離心去除所有的低溫保護劑,一些細胞系恢復得更好。將安瓿或冷凍液轉移到含有3-5毫升生長培養(yǎng)基的15毫升離心管中。在60-100xg 和8-10 °C 下離心5分鐘。除去上清液,重新懸浮顆粒,然后轉移到 T25燒瓶中,最終容量約為5毫升。如上所述,繼代培養(yǎng)成纖維細胞所需的培養(yǎng)。如果1-2周后細胞無法增殖,擴大備用燒瓶進行第二次冷凍。
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